Ob ein Antikörper inaktiv ist, hängt davon ab, ob er sich effektiv an Antigene binden oder neutralisieren kann. Die häufig verwendete Methode ist die Neutralisierung von Tests und ELISA-Tests, eine direkte Messfunktion, eine quantitative Blickbindungsfähigkeit.

Neutralisierungstest: Messung der Funktionsaktivität

Virusneutralisierungstest: nach der Mischung von Antikörpern und Viren infizierte Zellen, wenn die Zellenüberlebensrate hoch ist, zeigt, dass der Antikörper das Virus neutralisiert hat und die Aktivität normal ist.

Toxin-Neutralisierungstest: zum Beispiel Anti-O-Test, Antikörper und Toxine nach der Mischung mit roten Blutkörperchen, wenn die roten Blutkörperchen nicht aufgelöst sind, zeigt, dass der Antikörper das Toxin neutralisiert hat, die Aktivität ist okay.

ELISA: Quantitative Bindungsfähigkeit

Prinzip: Der Antikörper wird auf dem Festphasenträger adsorbiert und wird nach dem Hinzufügen des zu testenden Antikörpers durch das Enzym-Markieren der zweiten Anti-Farbdesignation, der Farbdesignationsgrad und die Antikörpermenge korreliert.

Schritte:

Antigen-Paket: Fixieren Sie das Antigen in der Mikroporenplatte.

Zu testenden Antikörpern hinzufügen: Binden an Antigen.

Hinzufügen der Enzymmarker II: Bindung an Antikörper.

Farbdesignation: Substrat, die Farbdesignation spiegelt die Menge an Antikörpern wider.

Ergebnisanalyse: Messung der Absorptionswerte und Vergleich mit der Standardkurve, um die Wirksamkeit und Aktivität von Antikörpern zu beurteilen.

Andere Hilfsmethoden

Immunhistochemie (IHC): Beobachten Sie die Kombination von Antikörpern und Gewebeantigenen, um die Spezifizität zu bewerten.

Kreuzreaktivitätstest: Überprüfen Sie, ob Antikörper an nicht-Zielantigene binden, um falsche Positiven zu vermeiden.

IV. Hinweise

Experimentelle Bedingungen: Temperatur, pH-Wert usw. müssen streng kontrolliert werden, um Auswirkungen auf das Ergebnis zu vermeiden.

Antikörperschutz: Vermeiden Sie wiederholtes Einfrieren und verhindern Sie Aktivitätsverlust.