Glukoseoxidase-Testbox 100 Röhre/48 Proben

Schritte zur Bestimmung:

1, Enzym-Calibrator vorwärmt mehr als 30 min, reguliert die Wellenlänge auf 450 nm.

2. Verdünnung des Reagents 3: Verdünnen Sie das Reagents 3 50-mal mit destilliertem Wasser, wie viel mit wie viel. (Reagenz 3 und destilliertes Wasser 1: 49 verdünnt.)

3, Arbeitsflüssigkeitsformering: 100 μl Reagenz II in Reagenz I hinzufügen und vollständig vermischen. Das ausgerüstete Reagenz kann eine Woche lang bei 4 ° C aufbewahrt werden. (Wenn es weniger einmalige Proben gibt, können Reagenz I und Reagenz II im Verhältnis von 20 ml zu 0,1 ml nach der tatsächlichen Dosis gemischt werden.)

4. Lösen Sie eine Flasche Reagenz mit 5 ml destilliertem Wasser (innerhalb einer Woche nach der Lösung).

5. Probenmessung (die folgenden Reagenzien in der 96-Loch-Platte in der Reihenfolge hinzufügen)

Besonderer Hinweis: Dieses Produkt dient ausschließlich der wissenschaftlichen Forschung und darf nicht zur direkten klinischen Untersuchung am Menschen verwendet werden.

Produktvorstellung:

Wählen Sie Antikoagulation Aufmerksamkeit:

Die Menge des Antikoagulants, das zu jeder Probe hinzugefügt wird, muss gleichzeitig die Menge des genommenen Vollbluts möglichst konsistent sein;

Nach der Sammlung von Antikoagulationsvollem Blut muss es leicht umgekehrt werden, um eine vollständige Antikoagulation zu verhindern, dass ein Teil des Blutes nicht mit Antikoagulationsmitteln in Kontakt steht und zur Gerinnung führt;

Antikoagulantes Vollblut sammelt relativ viel Plasma (1 ml Antikoagulantes Vollblut kann 0,4 bis 0,5 ml Plasma isolieren);

Nach der Gefrierkonservation des Antikoagulationsgesammelten Plasmas kann es bei der Auflösung zu flokularen Trübungen kommen, falls vorhanden, müssen Sie die Trübung nach der Messung entfernen.

Betriebsschritte:

Vor Beginn des Experiments sollten alle Reagenzien auf Raumtemperatur ausgeglichen werden (Reagenzien können nicht direkt inAuflösung bei 37°C) Beim Verdünnen von Reagenzien oder Proben ist es notwendig, sie zu vermischen, um Schäumen zu vermeiden. Vor dem Experiment sollte der Probengehalt vorhergesagt werden, wenn die Probenkonzentration zu hoch ist, sollte die Probe verdünnt werden, damit die verdünnte Probe dem Testbereich des Kits entspricht und dann mit dem entsprechenden Verdünnungsvermöglichten multipliziert wird.

1. Probenaufnahme: Setzen Sie jeweils leere Löcher, Standardlöcher und zu messende Probenlöcher ein. Leeres Loch und Probeverdünnungsflüssigkeit 100 μl, Rest-Loch jeweils Standard oder zu messende Probe 100 μl, achten Sie darauf, dass es keine Blasen gibt, Probe auf dem Boden des Enzym-Marker-Lochs, versuchen Sie, die Lochwand nicht zu berühren, leicht zu schütteln und zu mischen, Enzym-Marker mit einer Abdeckung oder einer Beschichtung, 37 ° C-Reaktion für 120 Minuten. Um die Wirksamkeit der Ergebnisse zu gewährleisten, verwenden Sie bei jedem Experiment eine neue Standardlösung.

2. Entfernen Sie die Flüssigkeit, trocknen Sie sie und waschen Sie sie nicht. 100 µl Arbeitsflüssigkeit der Detektionslösung A pro Loch (innerhalb einer Stunde vor der Verwendung) zugesetzt, Enzym-Markierungsplatte mit einer Beschichtung, 37 ° C-Reaktion für 60 Minuten.

3. Nach 60 Minuten Entfernen Sie die Flüssigkeit im Loch, trocknen Sie, waschen Sie die Platte dreimal, 1-2 Minuten pro Einweichen, etwa 400 μl / pro Loch, trocknen Sie (Sie können auch die Flüssigkeit im Loch trocknen).

4. Prüflösung B Arbeitsflüssigkeit pro Loch (mit der gleichen Prüflösung A Arbeitsflüssigkeit) 100 μl, Enzym-Markierungsplatte mit einer Beschichtung 37 ° C Reaktion für 60 Minuten.

5. Nach 60 Minuten Entfernen Sie die Flüssigkeit im Loch, trocknen Sie sie, waschen Sie die Platte 5 Mal, einweichen Sie sie 1-2 Minuten, 350 μl / pro Loch, trocknen Sie sie (Sie können auch die Flüssigkeit im Loch trocknen).

6. In der Reihenfolge pro Loch Substrat-Lösung 90 μl, Enzym-Markierungsplatte mit einer Beschichtung von 37 ° C Lichtschutz (innerhalb von 30 Minuten, zu diesem Zeitpunkt die ersten 3-4 Löcher des bloßen Auges sichtbaren Standards haben einen offensichtlichen Gradienten, die 3-4 Löcher Gradienten nicht offensichtlich sind, können beendet werden).

7. In der Reihenfolge jedes Loch 50 μl der Endlösung hinzufügen, um die Reaktion zu beenden, in diesem Fall wird das blaue Gelb. Die Zugabereihenfolge der Endflüssigkeit sollte möglichst dieselbe sein wie die Zugabereihenfolge der Substratflüssigkeit. Um die Genauigkeit der Ergebnisse zu gewährleisten, sollte die Endflüssigkeit so schnell wie möglich nach der Reaktionszeit des Substrats hinzugefügt werden.

8. Messung der Lichtdichte (OD-Wert) der einzelnen Löcher mit einem Enzym-Coupler bei einer Wellenlänge von 450 nm. Die Prüfung erfolgt unmittelbar nach dem Zusatz der Endflüssigkeit.

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